quais são os fungos endoparasitos?

Answer 1

Durante muito tempo, os fungos foram considerados como vegetais e, somente a partir de 1969, passaram a ser classificados em um reino à parte.

Os fungos apresentam um conjunto de características próprias que permitem sua diferenciação das plantas: não sintetizam clorofila, não tem celulose na sue parede celular, exceto alguns fungos aquáticos e não armazenam amido como substância de reserva.

A presença de substâncias quitinosas na parede da maior parte das espécies fúngicas e a sua capacidade de depositar glicogênio os assemelham às células animais.

Os fungos são seres vivos eucarióticos, com um só núcleo, como as leveduras, ou multinucleados, como se observa entre os fungos filamentosos ou bolores.
Seu citoplasma contém mitocôndrias e retículo endoplasmático rugoso.

Os fungos denominados fungos endoparasitos, são capazes de infectar os nematóides através de esporos, que uma vez ingeridos desenvolvem hifas responsáveis pela absorção do conteúdo interno do nematóide. Estes fungos não produzem hifas vegetativas fora do corpo do hospedeiro, mas hifas férteis ou conidióforos contendo esporos.

Ou sejam ficam dentro de um parasita...

Answer 2

O fungo nematófago Monacrosporium robustum foi detectado, isolado e identificado pela primeira vez de solos do Brasil, em maio de 1999, no Laboratório de Nematologia do Departamento de Fitossanidade da Universidade Estadual Paulista (UNESP), Campus de Jaboticabal, São Paulo, tendo sido o potencial como agente de biocontrole do nematóide de cisto da soja, Heterodera glycines raça 3 observado ao microscópio eletrônico de varredura (MEV) (Maia & Santos, 1999). Na presente pesquisa, detalhes das estruturas de captura, tamanho, forma e septação dos conídios, bem como nematóides capturados pelo fungo foram documentados. Monacrosporium robustum produz micélio hialino, e as estruturas de captura são constituídas por ramificações adesivas, na forma de protuberâncias verticais que surgem das hifas, medindo, em média, 10 µm de comprimento e 5 µm de diâmetro. Uma substância gelatinosa desprende- se dessas estruturas, ao contato com o nematóide, aprisionando-o. Os conídios do fungo são hialinos, fusóides com dois ou quatro septos, às vezes, cinco. Conídios jovens são asseptados e piriformes. Sob condições de laboratório, esse fungo predou 100% dos ovos e dos juvenis de segundo estádio de H. glycines e formas ativas de Panagrellus sp., no período de 72 h da exposição desses nematóides ao fungo.
Palavras-chave adicionais: controle biológico, fungo nematófago, nematóide de cisto da soja, microscopia eletrônica de varredura.

A ocorrência de fungos predadores de nematóides, em diferentes ecossistemas, no Brasil, tem sido constatada por vários autores (Naves & Campos, 1991; Santos et al., 1991; Ferraz et al., 1992; Maia & Ferraz, 1993; Maia et al., 1993; Santos, 1996; Ribeiro et al., 1999b). A grande maioria dos fungos nematófagos isolados e/ou testados para o controle de Heterodera glycines Ichinohe, 1952 e Meloidogyne spp. é do tipo oportunista (Carneiro & Gomes 1993; Chen et al., 1994; Chen et al., 1996; Coimbra et al., 1999; Freitas et al., 1999; Mizobutsi et al., 1999).

Santos (1991) e Dalla Pria (1992) observaram pronunciado efeito antagonista de Monacrosporium ellipsosporum (Grove) Cooke & Dickinson sobre Meloidogyne incognita (Kofoid & White, 1919) Chitwood, raça 3. Monacrosporium robustum McCulloch foi descrito por Janet S. McCulloch em 1977, isolado de amostras de solo em Queensland, na Austrália.

Em outro estudo, Santos (1996) avaliou o potencial in vitro de 18 isolados de fungos nematófagos a H. glycines, Pratylenchus brachyurus (Godfrey, 1929) Filipvej & Schuurmans Stekhoven, 1936, Meloidogyne arenaria (Neal, 1889) Chitwood, 1949, M. javanica (Treub, 1885) Chitwood, 1949 e M. incognita raça 3. De acordo com a autora, Arthrobotrys robusta Duddington, M. ellipsosporum e outros três isolados não identificados, pertencentes à subdivisão Mastigomycotina, foram os mais eficientes quanto ao parasitismo e à predação dos fitonematóides testados, com exceção de H. glycines. No entanto, sob condições de casa de vegetação, em cultivos seqüenciais de feijoeiro (Phaseolus vulgaris L.), tomateiro (Lycopersicon esculentuum Mill.) e alface (Lactuca sativa L.), M. ellipsosporum foi o mais eficiente na redução da população das três espécies de Meloidogyne mencionadas.

A habilidade dos fungos nematófagos em colonizar a rizosfera tem sido apontada como uma característica importante de um agente do biocontrole. Persson & Jansson (1999) estudaram, comparativamente, a colonização da rizosfera de tomateiro por 38 isolados de fungos nematófagos e avaliaram o controle de M. incognita e M. javanica por esses fungos, em casa de vegetação. Dentre os fungos, Arthrobotrys dactyloides Drechsler, A. superba Corda, M. ellipsosporum e M. gephyrophagum (Drechsler) Subramanian foram os mais freqüentes em rizosfera de tomateiro. Monacrosporium ellipsosporum e M. gephyrophagum, quando introduzidos no solo em alginato de sódio, exibiram grande capacidade de colonizar a rizosfera e esporularam duas vezes mais que os outros fungos em estudo. Entretanto, nenhum reduziu os danos causados pelos nematóides em plantas de tomateiro.

Ribeiro et al. (1999a) avaliaram a capacidade predatória de 59 isolados de Monacrosporium spp. frente a M. javanica e H. glycines. Esses autores observaram que a predação de juvenis de M. javanica variou de 71 a 100% para 27 isolados, enquanto, para H. glycines, 26 isolados não exerceram qualquer predação. Os outros 33 isolados exibiram máxima predação de apenas 1,2% de juvenis desse nematóide. Todos os isolados predaram Panagrellus sp.

Maia & Santos (1995, 1997 e 1999) ilustraram, ao MEV, as estruturas e formas de captura de Arthrobotrys brochopaga Drechsler, A. conoides Drechsler, A. musiformis Drechsler, A. oligospora Fresenius, Dactylella leptospora Drechsler, Harposporium sp.; M. cionopagum Drechsler, M. cystosporum Cooke & Dickinson e M. ellipsosporum. Chen & Dickson (1996) examinaram, através de microscopia óptica, MEV e microscopia eletrônica de transmissão (MET), a capacidade de penetração na parede de cistos de H. glycines por 12 espécies de fungos. O tempo de penetração variou de um dia a um mês. Por ocasião da penetração, as hifas ficavam aderidas à parede dos cistos. Os autores encontraram evidências de que houve dissolução da parede, formando-se orifícios de penetração.

O presente trabalho teve como objetivo estudar, através da microscopia eletrônica de varredura, o modo de ação de M. robustum sobre ovos e juvenis de segundo estádio de H. glycines.

MATERIAL E MÉTODOS


O estudo foi conduzido no Laboratório de Nematologia do Departamento de Fitossanidade da UNESP/ FCAV, Campus de Jaboticabal, São Paulo. O fungo foi isolado de amostras de solo de seringais da região geoeconômica de Rondonópolis, MT. Para a detecção e isolamento do fungo, foi utilizado o método de espalhamento de solo, segundo Barron (1977), modificado por Santos (1991). Caracteres morfométricos do fungo foram obtidos nos microscópios óptico e eletrônico de varredura. Foram medidos o comprimento e a largura de 30 conídios ao microscópio óptico. Utilizou-se um sistema de aquisição de imagens constituído por uma câmara digital SONY Hiper HAD, montada sobre um microscópio Olympus BX50, acoplada a um computador Pentium 200 MHZ com 128 MB de memória RAM. Preparações para o MEV foram efetuadas de acordo com a técnica de Maia & Santos (1997). Forma e septação de conídios, espessura de hifas, forma, comprimento e espessura das estruturas de captura, ovos e nematóides predados foram documentados. Os dados obtidos foram comparados com as descrições apresentadas por McCulloch (1977).

Uma cultura do fungo isolado foi repicada para quatro placas de Petri contendo ágar-água a 2% e incubadas no escuro, à temperatura ambiente, por 48 h. Posteriormente, para o estudo da patogenicidade do fungo, cada uma dessas placas recebeu 1 ml de suspensão do nematóide de vida livre (NVL) Panagrellus sp. contendo, em média, 200 espécimes/ml. Igual número de placas foi preparado com suspensão de ovos e juvenis de segundo estádio de H. glycines contendo, em média, 150 ovos e juvenis/placa e incubadas nas mesmas condições. Após 24 h do início da incubação, procederam-se as avaliações, tendo sido verificado que 100% das formas ativas dos juvenis e dos ovos de H. glycines haviam sido capturadas pelo fungo, o qual apresentava abundante esporulação. Então, as culturas foram fixadas nas placas com glutaraldeído a 3%, em solução tampão de fosfato de potássio 0,05 M e pH 7,4, por 72 h a 5 oC. Em seguida, foram lavadas seis vezes consecutivas na solução tampão pura, em um intervalo de 15 min e pós-fixadas em tetróxido de ósmio a 2%, na mesma solução tampão, por 8 h, à mesma temperatura. Posteriormente, foram novamente lavadas, como no caso anterior. Com o auxílio de uma espátula, pequenos retângulos do meio contendo as estruturas de interesse foram retirados e transferidos para frascos de vidro. A seguir, as amostras foram desidratadas em álcool etílico, secas em secador de ponto crítico, montadas, recobertas com ouro-paládio e elétron-micrografadas em microscópio eletrônico de varredura JEOL JSM 5410, operando em 15 kV (Maia & Santos, 1997).